MENGHITUNG LD50 DENGAN METODE “ FARMAKOPE INDONESIA (FI) EDISI III ”

MENGHITUNG LD50 DENGAN METODE “ FARMAKOPE INDONESIA (FI) EDISI III ”

Rumus yang digunakan:

M         =          a – b ( Σ pi – 0,5 )

Keterangan:

M         =          log LD50

a          =          log logaritma dosis terendah yang menyebabkan kematian 100% per kelompok

b          =          beda log dosis berurutan

Σpi       =          jumlah hewan yang mati dosis i dibagi hewan uji dosis i

Contoh soal:

Enceran virus	Hewan / kelompok	Hewan yang mati	Hewan yang hidup	Pi
100	10	10	0	1
10-1	10	10	0	1
10-2	10	10	0	1
10-3	10	8	2	0,8
10-4	10	4	6	0,4
10-5	10	0	10	0

Berapakah nilai LD50 nya?

JAWAB:

Σpi       =          1 + 0,8 + 0,4 +0  = 2,2

M         =          a – b ( Σ pi – 0,5 )

            =          -2 -1 (2,2 – 0,5 )

            =          -2 -2,2 + 0,5

            =          -3,7

LD50   =          10^-3,7

            =          1,995 X 10^-4

Untuk lebih jelasnya lihat pada gambar!

 

By: Fatma Zahra

Email: zfatma819@gmail.com

MENGHITUNG LD50 DENGAN METODE “ BEHREN DAN KALBER”

MENGHITUNG LD50 DENGAN METODE “ BEHREN DAN KALBER”

Rumus yang digunakan:

LD50   =          (D – jumlah ( A X B ) )  / m

Keterangan :

D         =          dosis kematian 100%

A         =          perbedaan dua dosis berturut-turut

B         =          rata-rata yang mati dua dosis berturut-turut

M         =          rata- rata hewan percobaan perkelompok

Contoh soal:

Dosis (mg/kg)                          = 15     20        25        30        35        40

Jumlah hewan perkelompok   = 20     50        95        75        44        20

Jumlah yang mati                    = 0       11        50        61        37        20

Berapa LD50 nya?

JAWAB:

LD50   =          (D – jumlah ( A X B ) )  / m

            =          ( 40  - 5 (5,5 + 30,5 + 55,5 + 49 + 28,5 )) / 50,6

            =          (40 – 854 ) / 50,6

            =          40 – 16,87

            =     23,13

Untuk lebih jelasnya lihat pada gambar!

Email : zfatma819@gmail.com

KROMATOGRAFI PENUKAR ION

KROMATOGRAFI PENUKAR ION

1.      PRINSIP

Pemisahan berdasarkan perbedaan kekuatan elektrostatik antara ion sampel dan ion muatan tetap didalam matriks tidak larut dalam fase diam

2.      KEGUNAAN

Untuk analisis asam amino, asam nukleat, asam organik

3.      FASE YANG DIGUNAKAN

a.       Fase diam : resin organik atau non organik, zeolitas

b.      Fase gerak : air/ dapar, cuplikan ion yang mengandung ion-ion yang bersaing untuk mendapatkan tempat pada fase diam

4.      JENIS RESIN

a.       Resin penukar kation

Mengandung gugus aktif yang bermuatan negatif.

Untuk pemisahan zat yang bersifat basa.

-          Asam sulfonat : penukar kation kuat à ph >1

-          SCX : penukar kation lemah à ph >6

b.      Resin penukar anion

Mengandung gugus aktif yang bermuatan positif.

Untuk pemisahan zat yang bersifat asam.

-          gugus amin kuarterner sebagai basa kuat : penukar anion kuat à ph<11

-          amin primer sebagai basa lemah : penukar anion lemah à ph <9

5.      REAKSI PENUKAR KATION DAN ANION

penukar kation : X⁺ + R^-Y⁺ à X⁺ R^- + Y⁺

penukar anion  : X^- + R⁺Y^- à X^- R⁺ +Y^-

6.      FUNGSI DAPAR DALAM AIR

a.       menyediakan ion lawan untuk kesetimbangan kation

b.      menjaga kekuatan ion

c.       PH fase gerak

Sumber:

“Analisis Fisikokimia : Kromatografi Volume 2”

Oleh : Prof. Dr. Harmita, Apt.

Penerbit: buku kedokteran EGC

KROMATOGRAFI PASANGAN ION

KROMATOGRAFI PASANGAN ION

1.      PRINSIP

Terjadinya penyerapan pereaksi pasangan ion kedalam fase diam dan pemisahan sampel ion asam sebagai fungsi PH. Pada kromatografi pasangan ion ini ditambahkan pereaksi pasangan ion pada fase gerak

2.      KEGUNAAN

Pemisahan senyawa ionik dan non ionik

3.      FASE YANG DIGUNAKAN

a.       Fase gerak : asetonitril, etanol

b.      Fase diam : C8, C18

4.      JENIS PEREAKSI PASANGAN ION YANG DITAMBAHKAN PADA FASE GERAK

a.       Alkil sulfonat : untuk pemisahan senyawa basa

b.      Garam tetraalkil amonium : untuk pemisahan senyawa asam

5.      PENGATURAN JARAK RETENSI DAN SELEKTIVITAS PADA KROMATOGRAFI PASANGAN ION PERLU DIATUR:

a.       Kekuatan pelarut

b.      Suhu

c.       Konsentrasi dapar

d.      Jenis pelarut

e.       Jenis dapar dan garam tambahan

f.        Pengubah amin

6.      MASALAH YANG TERJADI PADA KROMATOGRAFI PASANGAN ION

a.       Puncak artefak timbul

Solusi: cocokkan komposisi pelarut sampel dan fase gerak

b.      Keseimbangan kolom lambat

Solusi: penghilangan pereaksi pasangan ion dari pelarut pencuci, penyeimbangan kolom dengan fase gerak baru

c.       Bentuk puncak buruk

Solusi: tingkatkan suhu kolom

7.      KELEBIHAN

a.       Waktu kerja singkat

b.      Hasil reproducibel

c.       Peak tajam

d.      Dapat langsung memperoleh hasil pemisahan analit terionisasi dan tidak

e.       Pemisahan ionik dan nonionik dalam sampel yang sama

8.      KEKURANGAN

a.       Larutan ionik seringkali bersifat korosif sehingga koloni tidak tahan lama

b.      Beberapa larutan ionik mengasorbsi pada panjang larutan UV , tetapi membatasi detektor UV

c.       Bahan berdasar silika terbatas pada PH<7,5

d.      Fase gerak tidak boleh dibiarkan semalaman, tapi diganti dengan air

Sumber:

“Analisis Fisikokimia : Kromatografi Volume 2”

Oleh : Prof. Dr. Harmita, Apt.

Penerbit: buku kedokteran EGC

KROMATOGRAFI PARTISI

KROMATOGRAFI PARTISI

1.      PRINSIP

Terjadinya partisi antara fase gerak dengan fase diam

2.      KEGUNAAN

Untuk senyawa non polar hingga sangat polar dan memiliki gugus fungsional yang terionisasi lemah.misal antrasel dan paration

3.      Penyangga yang digunakan berupa partikel padat tempat fase diam terikat

4.      BERDASARKAN FASE TERIKAT KROMATOGRAFI PARTISI DIBAGI:

-          Fase normal : untuk memisahkan senyawa non polar yang larut dalam hidrokarbon dan bobot molekul <1000

-          Fase terbalik  : memisahkan senyawa polar, seperti alkohol dan amina

5.      PERBEDAAN ANTARA FASE NORMAL DAN FASE TERBALIK PADA KROMATOGRAFI PARTISI

No	Jenis/sifat	Fase normal	Fase terbalik
1	Fase diam (kolom)	polar	Non polar
2	Jenis kolom	Silika , alumina	-C8, -C18, -CN, -fenil
3	Fase gerak (eluen)	Non polar	Polar
4	jenis	Heksan, klorofrm, eter, campuran pelarut	MeOH, H2O, CH3CN, Etanol:air, asetonitril : air, hidrofuran : air, dioksan :air
5	Fase terikat yang diikatkan pada penyangga	Alkil nitril, alkilamin	Gugus oktil, gugus oktadesil
6	Urutan elusi	Non polar diawalàpolar diakhir	polar diawalànom polar diakhir

Sumber:

“Analisis Fisikokimia : Kromatografi Volume 2”

Oleh : Prof. Dr. Harmita, Apt.

Penerbit: buku kedokteran EGC